Pracownia Molekularnej i Komórkowej Nefrologii

 

Pracownia Molekularnej i Komórkowej Nefrologii

Katedra Biotechnologii Molekularnej

Wydział Chemii  (blok G) Uniwersytet Gdański

ul. Wita Stwosza 63

 80-308 Gdańsk

 


 

Kierownik Zespołu:

dr hab. inż. Agnieszka Piwkowska, prof. IMDiK - tel. 58 523 54 87

Ten adres pocztowy jest chroniony przed spamowaniem. Aby go zobaczyć, konieczne jest włączenie w przeglądarce obsługi JavaScript.

Pracownicy naukowi:

prof. dr hab. med. Stefan Angielski - tel. 58 523 54 88; Ten adres pocztowy jest chroniony przed spamowaniem. Aby go zobaczyć, konieczne jest włączenie w przeglądarce obsługi JavaScript.
dr hab. Dorota Rogacka - tel. 58 523 54 87; Ten adres pocztowy jest chroniony przed spamowaniem. Aby go zobaczyć, konieczne jest włączenie w przeglądarce obsługi JavaScript.
dr Irena Audzeyenka - tel. 58 523 54 87; Ten adres pocztowy jest chroniony przed spamowaniem. Aby go zobaczyć, konieczne jest włączenie w przeglądarce obsługi JavaScript.
dr Marlena Typiak (postdoc, projekt Opus) - tel. 58 523 54 86; Ten adres pocztowy jest chroniony przed spamowaniem. Aby go zobaczyć, konieczne jest włączenie w przeglądarce obsługi JavaScript.

Pracownicy naukowo-techniczni:

dr Ewelina Kreft (projekt Sonata Bis), Ten adres pocztowy jest chroniony przed spamowaniem. Aby go zobaczyć, konieczne jest włączenie w przeglądarce obsługi JavaScript.
mgr Anna Topolewska (projekt Sonata Bis), Ten adres pocztowy jest chroniony przed spamowaniem. Aby go zobaczyć, konieczne jest włączenie w przeglądarce obsługi JavaScript.

Doktoranci:

mgr Patrycja Rachubik - tel. 58 523 54 86; Ten adres pocztowy jest chroniony przed spamowaniem. Aby go zobaczyć, konieczne jest włączenie w przeglądarce obsługi JavaScript.
mgr Maria Szrejder - tel. 58 523 54 86; Ten adres pocztowy jest chroniony przed spamowaniem. Aby go zobaczyć, konieczne jest włączenie w przeglądarce obsługi JavaScript.
mgr Tomasz Kulesza - 58 523 54 89; Ten adres pocztowy jest chroniony przed spamowaniem. Aby go zobaczyć, konieczne jest włączenie w przeglądarce obsługi JavaScript.

 

Ogólny profil badawczy:

Główny nurt badań dotyczy molekularnych podstaw funkcji komórek kłębuszka nerkowego – podocytów - w stanach fizjologicznych i patologicznych np. cukrzycy oraz czynników endo-/para-/autokrynych regulujących funkcję kłębuszka nerkowego ze szczególnym uwzględnieniem przepuszczalności bariery filtracyjnej dla albuminy. Nadto, prowadzone są badania na patogenezą podocytopatii cukrzycowej.

 

Aktualnie prowadzone badania:


1.    Udział kinazy białkowej G w regulacji przepuszczalności filtru kłębuszkowego.
2.    Biochemiczne podstawy insulinooporności podocytów.
3.    Zjawisko autofagii podocytów w stanach patofizjologicznych.
4.    Rola wzajemnego oddziaływania Klotho-NPP1 w regulacji homeostazy wapnia i fosforanów oraz     rozwoju insulinoopornoci podocytów.


Obecnie realizowane granty:

  1. Rola kinazy białkowej G typu I alfa w regulacji przepuszczalności bariery filtracyjnej w dysfunkcji kłębuszków nerkowych (Sonata Bis, 2014/14/E/NZ4/00358; A. Piwkowska).
  2. Rola białek z rodziny Rho w regulacji cytoszkieletu komórek podocytarnych. Wpływ na migrację i przepuszczalność bariery filtracyjnej (Opus, 2015/17/B/NZ4/02658, A. Piwkowska).
  3. Rola zależnej od cGMP ścieżki sygnałowania komórkowego w regulacji ekspresji i aktywności deacetylazy SIRT1: nowy mechanizm indukcji insulinooporności podocytów eksponowanych na wysokie stężenie glukozy (Opus, 2016/23/B/NZ4/03448; D. Rogacka)
  4. Rola mitofagii i ocena zmian bioenergetyki podocytów w rozwoju insulinooporności i zaburzeniach funkcji bariery fitracyjnej w patogenezie nefropatii cukrzycowej (Sonata, 2016/23/D/NZ5/01449; I.Audzeyenka)
  5. Rola białek klotho i NPP1 w regulacji funkcji komórki podocytarnej (Opus, 2018/29/B/NZ4/02074; A. Piwkowska)
  6. Rola lizosomów w insulinozależnej regulacji ekspresji oraz aktywności kinazy białkowej aktywowanej przez AMP w podocytach. Wpływ na przepuszczalność bariery filtracyjnej (Preludium, 2018/29/N/NZ4/02212; P. Rachubik)

 Aparatura:

  • Urządzenia do hodowli komórkowych, (inkubatory CO2 f. New Brunswick, wyciąg laminarny f. Thermo Scientific)
  • Licznik scyntylacyjny f. Perkin Elmer
  • System do ilościowego PCR w czasie rzeczywistym f. Roche.
  • Aparat do pomiaru stężenia kwasów nukleinowych i białek Nanodrop, f. Thermo Scientific)
  • Urządzenia do elektroforezy białek i kwasów nukleinowych.
  • Mikropłytkowy czytnik absorbancji Elx808, f. BioTek
  • Fluorescencyjny mikroskop odwrócony, f. Olympus
  • Fluorescencyjny mikroskop odwrócony z inkubatorem CO2, f.Nikon
  • System do oznaczania przeżyciowo metabolizmu komórkowego Seahorse XFp, f.Agilent
  • Wielofunkcyjny czytnik płytek EnSpire, f.Perkin Elmer
  • System archiwizacji żeli i blotów ChemiDoc, f.Bio-Rad

 

Wybrane ostatnie publikacje:

  1. Rachubik P, Szrejder M, Rogacka D, Audzeyenka I, Rychłowski M, Angielski S, Piwkowska A. The TRPC6-AMPK Pathway is Involved in Insulin-Dependent Cytoskeleton Reorganization and Glucose Uptake in Cultured Rat Podocytes. Cell Physiol Biochem. 2018;51:393-410.
  2. Rogacka D, Audzeyenka I, Rychłowski M, Rachubik P, Szrejder M, Angielski S, Piwkowska A. Metformin overcomes high glucose-induced insulin resistance of podocytes by pleiotropic effects on SIRT1 and AMPK. Biochimica et Biophysica Acta 2018; 1864:115-125.
  3. Rogacka D, Audzeyenka I, Rachubik P, Rychłowski M, Kasztan M, Jankowski M, Angielski S, Piwkowska A. Insulin increases filtration barrier permeability via TRPC6-dependent activation of PKGIα signaling pathways. Biochimica et Biophysica Acta 2017; 1863:1312-1325.
  4. Audzeyenka I, Rogacka D, Piwkowska A, Angielski S, Jankowski M. Viability of primary cultured podocytes is associated with extracellular high glucose-dependent autophagy downregulation. Molecular and Cellular Biochemistry 2017; 430:11-19.
  5. Rogacka D, Piwkowska A, Audzeyenka I, Angielski S, Jankowski M. SIRT1-AMPK crosstalk is involved in high glucose-dependent impairment of insulin responsiveness in primary rat podocytes. Experimental Cell Research 2016; 349:328-338.
  6. Piwkowska A, Rogacka D, Audzeyenka I, Kasztan M, Angielski S, Jankowski M. Intracellular calcium signaling regulates glomerular filtration barrier permeability: the role of the PKGIα-dependent pathway. FEBS Letters 2016; 590:1739-1748.
  7. Audzeyenka I, Rogacka D, Piwkowska A, Rychlowski M, Bierla JB, Czarnowska E, Angielski S, Jankowski M. Reactive oxygen species are involved in insulin-dependent regulation of autophagy in primary rat podocytes. International Journal of Biochemistry & Cell Biology 2016; 75:23-33.
  8. Piwkowska A, Rogacka D, Audzeyenka I, Kasztan M, Angielski S, Jankowski M. Insulin increases glomerular filtration barrier permeability through PKGIα-dependent mobilization of BKCa channels in cultured rat podocytes. Biochimica et Biophysica Acta – Molecular Basis of Disease 2015; 1852:1599-1609.
  9. Piwkowska A, Rogacka D, Audzeyenka I, Angielski S, Jankowski M. Combined effect of insulin and high glucose concentration on albumin permeability in cultured rat podocytes. Biochemical and Biophysical Research Communications 2015; 461(2):383-389.
  10. Rogacka D, Piwkowska A, Audzeyenka I, Angielski S, Jankowski M. Involvement of the AMPK-PTEN pathway in insulin resistance induced by high glucose in cultured rat podocytes. International Journal of Biochemistry and Cell Biology 2014; 51:120-130.
  11. Piwkowska A, Rogacka D, Angielski S, Jankowski M. Insulin stimulates glucose transport via protein kinase G type I alpha-dependent pathway in podocytes. Biochemical and Biophysical Research Communications 2014; 446:328-334.
  12. Piwkowska A, Rogacka D, Audzeyenka I, Angielski S, Jankowski M. High glucose increases glomerular filtration barrier permeability by activating protein kinase G type Iα subunits in a Nox4-dependent manner. Experimental Cell Research 2014; 320:144-152.